Lipopeptydy

Lipopeptydyorganiczne związki chemiczne składające się z części peptydowej i lipidowej. Wiele z naturalnych i syntetycznych lipopeptydów wykazuje aktywność biologiczną[1]. Naturalne lipopeptydy są syntezowane drogą nierybosomalną w komórkach bakterii oraz grzybów, w trakcie przemian różnych związków organicznych[2].

Budowa

Cząsteczki lipopeptydów zbudowane są z cyklicznej lub liniowej części peptydowej oraz kowalencyjnie przyłączonego do niej łańcucha lipidowego lub innej cząsteczki lipofilowej. Ze względu na swoją budowę mają właściwości amfifilowe, to znaczy, że zawierają ugrupowania hydrofobowe – część lipidową, jak i hydrofilowe – część peptydową. Cyklizacja części peptydowej lipopeptydów znacznie wpływa na ochronę przez proteolizą[1].

Zastosowanie

Antybiotyki lipopeptydowe

Wiele lipopeptydów to antybiotyki należące do klasy peptydów przeciwdrobnoustrojowych o szerokim spektrum działania przeciwbakteryjnego[2]. Pierwszy lipopeptyd o właściwościach przeciwdrobnoustrojowych, czyli polimyksyna A został odkryty i wyizolowany w 1949 r. z bakterii glebowej Bacillus polymyxa[3]. Mechanizm działania lipopetydów opiera się na dezintegracji błony komórkowej drobnoustrojów, co prowadzi do powstania defektów w jej strukturze, a w efekcie do utraty potencjału błonowego oraz redukcji zdolności syntezy ATP, co w konsekwencji prowadzi do śmierci komórki[2].

Daptomycyna jest powszechnie stosowanym, naturalnie występującym, cyklicznym lipopeptydem. Jest stosowana jako lek w Stanach Zjednoczonych w leczeniu ogólnoustrojowych i zagrażających życiu zakażeń wywołanych przez bakterie Gram-dodatnie. Wykazuje aktywność przeciwko klinicznie opornym patogenom, takim jak gronkowiec złocisty oporny na metycylinę (MRSA), enterokoki oporne na wankomycynę (VRE), średniowrażliwe na glikopeptydy S. aureus (GISA), koagulazo-ujemne gronkowce (CNS) i oporny na penicylinę Streptococcus pneumoniae (PRSP)[4][5].

Inną grupą antybiotyków lipopeptydowych są polimyksyny B i E[6]. Pozwalają one zwalczać antybiotykooporne bakterie Gram-ujemne[7], a ich działanie polega na uwrażliwieniu bakterii na działanie antybiotyków skutecznych przeciw bakteriom Gram-dodatnim, gdyż umożliwiają ich przeniknięcie przez błonę komórkową[6]. Ich wadą jest neuro- i nefrotoksyczność[7].

Oktapeptyny są uważane za kolejną obiecującą grupę lipopeptydów przeciwbakteryjnych. Zostały opracowane w latach 70. XX wieku. Wykazują dobrą aktywność przeciwko bakteriom Gram-dodatnim, drożdżom i grzybom, mają lepsze działanie przeciwdrobnoustrojowe przeciwko opornym na polimyksynę bakteriom Gram-ujemnym, a potencjalnie oktapeptyna C4 ma zmniejszoną nefrotoksyczność w porównaniu z polimyksyną B i E. Wadą jest to, że jej skuteczność in vivo jest raczej słaba, najprawdopodobniej z powodu dużego wiązania z białkami osocza. Innym członkiem tej grupy jest oktapeptyna B5, która wykazuje działanie bakteriobójcze na bakterie Gram-ujemne, w tym wielolekooporne i skrajnie lekooporne izolaty kliniczne[8][9].

Echinokandyny stanowią klasę lipopeptydów o właściwościach przeciwgrzybiczych, są inhibitorami syntezy enzymu β(1,3)-D-glukanu[3]. Wszystkie cząsteczki w zastosowaniu klinicznym oraz na etapie badań rozwojowych to amfifilowe cykliczne heksapeptydy z N-połączonym łańcuchem bocznym acylolipidu i masą cząsteczkową około 1200 Da[10]. Echinokandyny zostały wyizolowane po raz pierwszy ze szczepu Aspergillus ruglosus i Aspergillus nidulans i charakteryzują się silnym działaniem przeciwgrzybiczym i przeciwdrożdżowym[11].

Pierwszym zarejestrowanym lekiem z grupy echinokandyn była półsyntetyczna kaspofungina, która pozyskiwana jest z grzyba Glarea lozoyensis. Jest przeznaczona do leczenia inwazyjnej aspergilozy[12].

  • Daptomycyna
    Daptomycyna
  • Polimyksyna E
    Polimyksyna E
  • Echinokandyna B
    Echinokandyna B
  • Kaspofungina
    Kaspofungina

Prace rozwojowe

Ze względu na stale rosnącą antybiotykooporność bakterii poszukiwane są nowe, często syntetyczne, lipopeptydy. Jednym z przykładów są związki zbudowane z tetrapeptydu sprzężonego z kwasami tłuszczowymi o różnych długościach łańcucha. Wpływają one na modelowe błony komórek bakteryjnych, zarówno bakterii Gram-ujemnych, jak i Gram-dodatnich, oraz wykazują stosunkowo niski poziom aktywności hemolitycznej[5].

Lipopeptydy w przemyśle kosmetycznym

Lipopeptydy są stosowane w przemyśle kosmetycznym ze względy na swoje wyjątkowe właściwości powierzchniowe (obniżają napięcie międzyfazowe, w szczególności napięcie powierzchniowe wody), działają przeciwzmarszczkowo oraz nawilżająco na skórę[13].

Surfaktyna jest najbardziej aktywnym biosurfaktantem o doskonałych właściwościach[14]. Znajduje zastosowanie dermatologiczne – stosuje się ją miejscowo. Surfaktyny są wysoce biokompatybilne i bardzo mało cytotoksyczne dla komórek ssaków. Niektóre firmy wykorzystują ją także w kosmetykach myjących[13][15].

Kilka firm z siedzibą w USA wprowadziło na rynek produkty anti-aging zawierające lipopeptydy. Właściwości lipopeptydów bezpośrednio pomagają stymulować produkcję kolagenu i elastyny. Dodatek antyoksydantu w kosmetykach to najskuteczniejszy sposób na opóźnienie peroksydacji lipidów[16]. Przeciwutleniacze chronią skórę przed wolnymi rodnikami, a co za tym idzie, sprawiają, że skóra jest gładsza i bardziej miękka. Dodatkowo dzięki swoim właściwościom przeciwbakteryjnym zabezpieczają skórę przed rozwojem bakterii, co przekłada się na bezpieczeństwo produktów kosmetycznych[17].

Lipopeptydy w przemyśle spożywczym

W przemyśle spożywczym lipopeptydy są wykorzystywane jako emulgatory w przetwarzaniu surowej żywności[3].

W piekarnictwie surfaktyny i ramnolipidy służą do zapewnienia trwałości, struktury i objętości wypieków. W przypadku wypieku muffinów i croissantów zaleca się dodatek 0,10% ramnolipidu w celu poprawy zawartości wilgoci, konsystencji i zachowania świeżości przez dłuższy czas[18]. Lipopeptydy zapobiegają również korozji powierzchni ze stali nierdzewnej[19].

Przypisy

  1. a b Ian W.I.W. Hamley Ian W.I.W., Lipopeptides: from self-assembly to bioactivity, „Chemical Communications”, 51 (41), 2015, s. 8574–8583, DOI: 10.1039/c5cc01535a, PMID: 25797909  (ang.).
  2. a b c PaulinaP. Czechowicz PaulinaP., JoannaJ. Nowicka JoannaJ., Antimicrobial activity of lipopeptides, „Postępy Mikrobiologii – Advancements of Microbiology”, 57 (3), 2018, s. 213–227, DOI: 10.21307/PM-2018.57.3.213  (ang.).
  3. a b c Santi M.S.M. Mandal Santi M.S.M., Aulus E.A.D.A.E.A.D. Barbosa Aulus E.A.D.A.E.A.D., Octavio L.O.L. Franco Octavio L.O.L., Lipopeptides in microbial infection control: scope and reality for industry, „Biotechnology Advances”, 31 (2), 2013, s. 338–345, DOI: 10.1016/j.biotechadv.2013.01.004, PMID: 23318669  (ang.).
  4. F.P.F.P. Tally F.P.F.P. i inni, Daptomycin: a novel agent for Gram-positive infections, „Expert Opinion on Investigational Drugs”, 8 (8), 1999, s. 1223–1238, DOI: 10.1517/13543784.8.8.1223, PMID: 15992147  (ang.).
  5. a b JoannaJ. Juhaniewicz-Dębińska JoannaJ., DamianD. Dziubak DamianD., SławomirS. Sęk SławomirS., Physicochemical Characterization of Daptomycin Interaction with Negatively Charged Lipid Membranes, „Langmuir”, 36 (19), 2020, s. 5324–5335, DOI: 10.1021/acs.langmuir.0c00716, PMID: 32340456, PMCID: PMC7588137  (ang.).
  6. a b MarttiM. Vaara MarttiM., Polymyxins and Their Potential Next Generation as Therapeutic Antibiotics, „Frontiers in Microbiology”, 10, 2019, DOI: 10.3389/fmicb.2019.01689  (ang.).
  7. a b Nagah E.N.E. Edrees Nagah E.N.E. i inni, Curcumin alleviates colistin-induced nephrotoxicity and neurotoxicity in rats via attenuation of oxidative stress, inflammation and apoptosis, „Chemico-Biological Interactions”, 294, 2018, s. 56–64, DOI: 10.1016/j.cbi.2018.08.012, PMID: 30138604  (ang.).
  8. TonyT. Velkov TonyT. i inni, Structure, Function, and Biosynthetic Origin of Octapeptin Antibiotics Active against Extensively Drug-Resistant Gram-Negative Bacteria, „Cell Chemical Biology”, 25 (4), 2018, 380–391.e5, DOI: 10.1016/j.chembiol.2018.01.005, PMID: 29396290, PMCID: PMC6560181  (ang.).
  9. Gayan Heruka DeG.H.D. Zoysa Gayan Heruka DeG.H.D. i inni, Antimicrobial peptides with potential for biofilm eradication: synthesis and structure activity relationship studies of battacin peptides, „Journal of Medicinal Chemistry”, 58 (2), s. 625–639, DOI: 10.1021/jm501084q, PMID: 25495219  (ang.).
  10. David W.D.W. Denning David W.D.W., Echinocandin antifungal drugs, „The Lancet”, 362 (9390), 2003, s. 1142–1151, DOI: 10.1016/S0140-6736(03)14472-8  (ang.).
  11. GiovannaG. Pirri GiovannaG. i inni, Lipopeptides as anti-infectives: a practical perspective, „Open Life Sciences”, 4 (3), 2009, s. 258–273, DOI: 10.2478/s11535-009-0031-3  (ang.).
  12. ValérieV. Letscher-Bru ValérieV., RaoulR. Herbrecht RaoulR., Caspofungin: the first representative of a new antifungal class, „The Journal of Antimicrobial Chemotherapy”, 51 (3), 2003, s. 513–521, DOI: 10.1093/jac/dkg117, PMID: 12615851  (ang.).
  13. a b M.M. Kanlayavattanakul M.M., N.N. Lourith N.N., Lipopeptides in cosmetics, „International Journal of Cosmetic Science”, 32 (1), 2010, s. 1–8, DOI: 10.1111/j.1468-2494.2009.00543.x, PMID: 19889045  (ang.).
  14. E.E. Rosenberg E.E., E.Z.E.Z. Ron E.Z.E.Z., High- and low-molecular-mass microbial surfactants, „Applied Microbiology and Biotechnology”, 52 (2), 1999, s. 154–162, DOI: 10.1007/s002530051502, PMID: 10499255  (ang.).
  15. K.K. Arima K.K., A.A. Kakinuma A.A., G.G. Tamura G.G., Surfactin, a crystalline peptidelipid surfactant produced by Bacillus subtilis: isolation, characterization and its inhibition of fibrin clot formation, „Biochemical and Biophysical Research Communications”, 31 (3), 1968, s. 488–494, DOI: 10.1016/0006-291x(68)90503-2, PMID: 4968234  (ang.).
  16. PoojaP. Singh PoojaP., Swaranjit SinghS.S. Cameotra Swaranjit SinghS.S., Potential applications of microbial surfactants in biomedical sciences, „Trends in Biotechnology”, 22 (3), 2004, s. 142–146, DOI: 10.1016/j.tibtech.2004.01.010, PMID: 15036865  (ang.).
  17. LijunL. Sun LijunL. i inni, Isolation and characterization of a co-producer of fengycinsand surfactins, endophytic Bacillus amyloliquefaciens ES-2, from Scutellaria baicalensis Georgi, „World Journal of Microbiology and Biotechnology”, 22 (12), 2006, s. 1259–1266, DOI: 10.1007/s11274-006-9170-0  (ang.).
  18. Niranjan R.N.R. Gandhi Niranjan R.N.R., Victoria L. PalmerV.L.P. Skebba Victoria L. PalmerV.L.P., Rhamnolipid compositions and related methods of use, patent US 7968499B2, 28 czerwca 2011  (ang.).
  19. CatherineC. Dagbert CatherineC., ThierryT. Meylheuc ThierryT., Marie-NoëlleM.N. Bellon-Fontaine Marie-NoëlleM.N., Corrosion behaviour of AISI 304 stainless steel in presence of a biosurfactant produced by Pseudomonas fluorescens, „Electrochimica Acta”, 51 (24), 2006, s. 5221–5227, DOI: 10.1016/j.electacta.2006.03.063  (ang.).